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Chronobiotron UMS3415
Responsable : Dominique CIOCCA • Responsable Tech. : Sophie REIBEL FOISSET
Adresse : Centre de Neurochimie
5 rue Blaise Pascal
67084 Strasbourg

complements

Certifications

Pas de certification ISO

Site web

http://neurochem.u-strasbg.fr/5plateform...

Presentation de la plate-forme

Plate-forme hébergée dans les étages du Centre de Neurochimie qui héberge également l’Institut des Neurosciences Cellulaires et Intégratives, sur le campus universitaire central de Strasbourg.
Plusieurs unités distinctes sur une surface totale de 1700 m2 : 1/ animalerie conventionnelle spécialisée dans l’étude des rythmes biologiques (19 pièces d’élevage, 9 pièces d’expérimentation, 770 m2), 1 annexe de 60 m2 - 7 pièces ( 1er étage du bâtiment) + 1 annexe de 40m2 (2 pièces d'enregistrement sommeil + 1 comportement + 1 hébergement, 3ème étage) + 1 annexe 70m2 (1 pièce hébergement 2 salles chirurgie (dont 1 L2) + 1 autopsie, 3ème étage); 1 annexe 20m2 (1 pièce hébergement, 2ème) + 1 annexe 120 m2 (8 pièces hébergement/procédures + 1 autopsie, 4èlme étage)
2/ animalerie transgénique EOPS pour le maintien et l’expansion de lignées de souris et de rats mutants naturels ou génétiquement modifiés (7 pièces d’élevage, 480 m2, capacité maximum 6000 souris, 500 rats); 3/ zone sécurisée de niveau 3 (animalerie EOPS et laboratoire A3/L3, 110 m2).
Trois équipes de zootechniciens affectés spécifiquement soit à l'animalerie conventionnelle (5 zootechniciens) soit aux animaleries protégées transgéniques et A3 (4 zootechniciens) soit aux annexes (2 zootechniciens), direction scientifique, technique et sanitaire assurée par 2 ingénieurs de recherche.
Large choix d'espèces utilisées en chronobiologie et en neurobiologie: des modèles nocturnes (rats, souris, OGM ou non), un modèle de rongeur diurne (Arvicanthis ansorgei), des modèles saisonniers (hamsters dorés – rongeurs hibernants et hamsters sibériens – rongeurs présentant des torpeurs à des températures basses), un modèle d’horloge circannuelle (hamster d’Europe – rongeur hibernant). Contrôle et régulation très précise des conditions environnementales (température, hygrométrie, photopériode). Pièces d’hébergement et d’expérimentation équipées de néons rouges pour travail pendant la phase nocturne du cycle jour/nuit. Possibilité d’allumage/extinction progressifs des lumières pour mimer l’aube et le crépuscule. Chambres climatiques pour protocoles d’hibernation (température maintenue à 6°C).
Prestations:
Elevage et hébergement des modèles animaux pour la chronobiologie et la neurobiologie : rats/souris (rongeurs nocturnes), hamsters syriens (photopériodiques et modèle d’hibernation), hamsters de Sibérie (photopériodiques avec des torpeurs diurnes à basse température), hamsters européens (horloge circannuelle et le modèle d'hibernation) et Arvicanthis ansorgei (rongeur diurne).
Elevage et maintenance de colonies de souris/rats génétiquement modifiés dans des conditions hautement contrôlées, à différents niveaux de confinement (A1, A2, A3). Caudectomie et tatouage des animaux produits. Accès permanent aux fichiers animaux pour les chercheurs.
Production de cohortes d'animaux conventionnels (souris C57BL/6J, OF1, CD1, rats Wistar) de sexe et âge définis, préparation de femelles gestantes datées.
Préparation de modèles animaux pour la physiologie (adrénalectomisés, gonadectomisés, pinéalectomisés), avec ou sans traitement hormonal.
Enregistrements télémétriques (souris, rat, hamster, arvicanthis) de la température corporelle chez des animaux implantés avec un émetteur (rat, hamster, Arvicanthis, souris).; de l'activité locomotrice générale par capteur infra-rouge, vidéo-traçage ou activité de roue, couplage possible à l’enregistrement de la température corporelle; du cycle veille-sommeil par enregistrements multiparamétrés (électroencéphalogramme EEG, l'électro-oculogramme EOG, EMG électromyogramme) et de l’ECG (électrocardiogramme) couplés à détection activité générale + enregistrement vidé comportement.
Tests comportementaux pour (1) le phénotypage de l'anxiété / dépression: light-dark box, open field, plusieurs modèles de labyrinthes, test de nage forcée, test de suspension caudale (souris), (2) le phénotypage nociception/douleur : filament de Von Frey, plaque chaude, plaques de préférence thermique (3) le phénotypage apprentissage/mémoire (radial maze...)
Exploration métabolique : restriction alimentaire (souris, rat, hamster, arvicanthis), mesure de la glycémie, test de tolérance au glucose, calorimétrie indirecte avec collecte urine/fèces couplée à la prise alimentaire et hydrique et mesure de l’activité locomotrice (souris, rat).
Canulation chronique (artère carotide, veine jugulaire - rat, souris, hamster) + système automatisé pour les prélèvements sanguins séquentiels (suivi des rythmes hormonaux/métabolites).
Perfusions chroniques intra-péritonéales ou sous-cutanées pour les études pharmacologiques (souris, rat, hamster, arvicanthis).
Microdialyse intracérébrale (souris, rat, hamster, arvicanthis).
Réalisation à façon de protocoles d’administration de substances pharmacologiques, de restriction alimentaire.
Location d'équipements pour protocoles de restriction alimentaires.
Enregistrement continu de la bioluminescence (système luciférase) intracérébrale in vivo chez le rat et la souris.
Enregistrements électrophysiologiques in vivo : enregistrement extracellulaire, souris, rat, arvicanthis.
Réalisation de toutes ces procédures en conditions photopériodiques strictement contrôlées par une gestion technique centralisée, location d’armoires ventilées pour exposition de cohortes à différents régimes photopériodiques.
Formation des étudiants et chercheurs aux différentes techniques utilisées sur la plate-forme grâce, notamment pour la chirurgie, à un stéréomicroscope équipé d'une caméra et d'un écran.
Actions de formation:
• Participation ou organisation de formations du Département Education Permanente de l'UdS (D. Ciocca : neurobiologie des rythmes - S. Reibel : expérimentation animale niveaux 1 et 2, pathologie des animaux de laboratoire, rédaction d’une saisine de comité d’éthique, soins des animaux : notions de base et bonnes pratiques).
• Formations des étudiants: organisation de TP Master 2 écophysiologie animale
• Organisation de 4 ateliers AFSTAL à Strasbourg (alimentation des animaux de labo en 2009; mise en place d'un programme sanitaire en animalerie en 2010; observation et suivi des animaux de laboratoire: bonnes pratiques au quotidien en 2012, Génétique et animalerie : production, utilisation, conservation des colonies en 2014 ).
• Formation pour les utilisateurs du Chronobiotron sur l’euthanasie : techniques éthiques et sûres (février 2012) et formalisation des saisines éthiques (2014).
• Formation pour les utilisateurs du Chronobiotron sur l’éthique en expérimentation animale.
• Formations internes pour les personnels du Chronobiotron, 1 heure par mois.
• Constitution du réseau des animaleries de Strasbourg : CARA (collectif des animaleries de recherche d’Alsace), lancement printemps 2013, organisation de 6 formations entre 2013 et 2016
• Participation au réseau ROCAD (Réseau Opérationnel de Centres pour faciliter l'Accès et la Distribution des modèles souris): groupes de travail sur les bonnes pratiques zootechniques chez les rongeurs, suivi sanitaire, transport).Absorbé ne 2015 par Celphedia.
• Participation au réseau CELPHADIA : groupes de travail WP1 (formation), 3 (zootechnie éthique et bien-être animal), 4 (phénotypage rongeurs et projets multi-espèces)

Moyens et equipements

Moyens:
Facturation des prestations (hébergement, protocoles expérimentaux), utilisateurs: EPST (70%), sociétés privées (30%).
Partenaire d'une ANR (production d'arvicanthis génétiquement modifiés), 2008-2011
Partenaire d'un programme de ré-introduction du hamster d'Europe (soutien financier), fin 12/2012
Enveloppe soutien de base: CNRS (2013)
Equipements:
Gestion technique centralisée pour la régulation et le contrôle des conditions environnementales.
Laverie: laveuse double face, hottes de vidage.
Animaleries transgénique et A3: hébergement des rongeurs en portoirs ventilés, hottes de change et de vidage, autoclaves, sas chimiques.
Laboratoire L3: PSM, cadre stéréotaxique, poste de perfusion intracardiaque, histologie (ultramicrotome, vibratome, cryostat, microscope à fluorescence ), culture cellulaire (incubateur), biochimie (centrifugeuses, lecteur microplaques ELISA , -80°), micromanipulateur.
Zone conventionnelle: télémétrie (mesure température corporelle, paramètres EEG, ECG, EOG, activité locomotrice de roue, activité locomotrice générale par capteur infra-rouge, vidéo-traçage , couplage possible à l’enregistrement de la température corporelle.
Tests comportementaux pour le phénotypage de l'anxiété / dépression: light-dark box, open field, plusieurs modèles de labyrinthes, test de nage forcée, test de suspension caudale, (souris).Tests comportementaux pour le phénotypage de la nociception/douleur : Filament de Von Frey , plaque chaude, plaques préférence thermique, Cages pour microdialyse intracérébrale. Cages pour restriction alimentaire, plate-forme de calorimétrie indirecte.Système automatisé pour prélèvements sanguins (2 accusamplers).
Set-up de mesure de bioluminescence, anesthésie gazeuse, stéréomicroscopes.
Pas d'équipement unique d'une valeur supérieure à 150 000 euros.

Galerie

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