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Imagerie Sciences du Vivant-in vitro
Responsable : YVES USSON • Responsable Tech. : YVES USSON
Adresse : Pavillon Le Taillefer
Domaine de la Merci
38706 LA TRONCHE cedex

complements

Certifications

Pas de certification ISO

Site web

http://www.biotech-pipeline.com/fr/in-vi...

Presentation de la plate-forme

La plateforme ISDV-vitro offre un large éventail d'outil d'imagerie microscopique pour l'imagerie cellulaire et tissulaire: Microscopie de fluorescence, Microscopie Spectrale, Microscopie NLO (biphotonique, SHG), Microscopie Holographique Numérique, Micro Spectrométrie, Microscopie Force Atomique, Video-microscopie, Microscopie Electronique, Microdissection.
Ces moyens d'imagerie sont distribués sur 5 sites, chacun de ses sites représente un type de compétences et de savoir faire propre qui peuvent être apportés en plus-value par rapport à la simple ouverture d'accès aux ressources technologiques.
La diversité des sites est aussi à l'origine de la diversité des systèmes biologiques analysés qui vont de l'étude de la dynamique moléculaire au sein du noyau cellulaire (normal et cancer), en passant par l'organisation spatiale et fonctionnelle des cellules dans les tissus (neurosciences, oncologie et ontologie).

Sous-plateforme Imagerie Cellulaire de l'IAB (Institut of Advanced Biologie) Domaine CHU Grenoble
4 confocaux (2 with spectral detection) LSM510, LSM710 NLO, LSM510 META NLO, SD Andromeda
2 fluorescence correlation spectrometers Zeiss Confocor 2, Confocor 3
2 two-photon and FLIM facilities: Becker&Hickl , SPC830
3 videomicroscopes: AxioObserver Z1, AxioVert200M, AxioObserver M1
2 modules for TIRF & FRAP : Zeiss-Errol-Rapp Opto, TILL-FEI
6 upright motorized microscopes : Zeiss AxioImagerM2, AxioImager Z1 ApoTome, AxioSkope, Olympus BX41, BX51, BX51M
2 Flow cytometer analyzers: BD LSR II, Accuri
1 cell sorter: BD FACS Aria
Software : MetaMorph, Volocity, ZEN, OA FEI, AxioVision, SPCImage, SimFCS, Origin, FCS experess, DIVA
4 off-line analysis high-end workstations
Spectrophotometer (Uvikon), spectrofluorimeter (PerkinElmer)

Sous-plateforme PIC (Plateforme d'Imagerie Cellulaire) du GIN (Institut des Neurosciences) Domaine CHU Grenoble
Basic inverted microscopes:
- NIKON Eclipse TS100
- NIKON Eclipse E600
Videomicroscopy:
- ZEISS Axiovert 200M/ROPER: Inverted microscope, thermoregulation & CO2 incubator, motorized stage, longtime acquisitions (up to 5 days)
- ZEISS Axiovert 200M/ROPER: Inverted microscope, thermoregulation, time-lapse
- LEICA DMI6000/Roper: inverted microscope, DG4 (FRAP module)
Spinning Disk CSUW1 Zeiss/Roper: Inverted microscope, thermoregulation & CO2 incubator, motorized stage, TIRF/FRAP/PALM/STORM modules
NIKON Eclipse Ti/Roper: inverted microscope, azimuthal TIRF (Ilas 2)
Confocal inverted microscopes:
- ZEISS LSM710 + Airyscan head
- LEICA SPE DMI4000
Two-photon microscopes:
- ZEISS 7MP upright microscope, 3 NDD (epicollection), motorized stage (living animal)
- SliceScope Pro 6000 + TRiMScope II, 4 detectors (2 GaAsP), resonant scanner and galvanometric scanner, Patch-clamp amplifier+2 micromanipulator, LED
- 2 Ti-Sapphir lasers: COHERENT Laser Chameleon Vision II (690-1080 nm) + Spectra-Physics Insight DeepSee (680-1300 nm)

Sous-plateforme MEC Microscopie électronique du GIN (Institut des Neurosciences) Domaine CHU Grenoble
Microscope électronique à transmission JEOL 1200 EX (1995), camera numérique Veleta (SIS, Olympus), Evaporateur JEOL (1995), 2 Ultra-cryo-microtomes, Appareil de congélation haute pression (HPM100 Leica), Appareil de cryosubstitution (AFS2, Leica).

Sous-plateforme MBIOP du LiPhy (Lab. Interdisciplinaire de Physique) Domaine Universitaire St Martin d'Hères
Microscope bi-photonique droit de très grande étendues spectrale (680 – 1080 nm), muni d’optique adaptative et de FCS
Microscope à feuille de lumière
Microscope FCS et multi-FCS (488 et 637 nm)
Microscope équipé d’un dispositif MOSAIC pour multi-FRAP, multi-photoactivation/photoinactivation et pour la mesure de forces de traction ;
Microscope confocal pour l'optique adaptative et la FCS (561 nm)
Microscopie ultra-sensible d’objets en milieux diffusants par rétro-diffusion à 1080 nm
Spectrofluorimètre Jobin-Yvon en absorption (250 – 1000 nm) et fluorescence (290 – 850 nm)
Microscope à force atomique couplé à un microscope inversé (en milieu liquide)
Micro-fabrication

Sous-plateforme ICTiss (Imagerie cellulaire et Tissulaire) de TIMC-IMAG UMR5525, Domaine CHU Grenoble
Microscope confocal spectral LSM 710 Zeiss avec chambre d'incubation,
Microscope à Force Atomique ,
Microscope Holographique (DHM),
Station de video-microscopie de fluorescence,
Station de Bioluminescence

Moyens et equipements

Site Laboratoire Interdisciplinaire de Physique MBIOP:
Microscope confocal à balayage : 2008
Microscope bi-photon (prototype) : 2003
Microspectrofluorimetre: 2009
Microscope TIRF (prototype) : 2008
Microimagerie LOFI par rétrodiffusion Laser 2005
Pinces optiques : 2000

Site Institut Albert Bonniot (IIAB)
Microscope confocal à balayage laser Zeiss, LSM 510 NLO : 2002
Laser Pulsé Tsunami (couplage avec LSM 510) Spectra Physics : 2002
Spectromètre à corrélation de fluorescence FCS (couplé avec LSM 510) Zeiss, Confocor II : 2001
Station Vidéo-microscopie avec chambre d'incubation + logiciel traitement d'images : 1999
Station Vidéo-microscopie rapide avec le module TIRF, chambre d'incubation + logiciel traitement d'images : 2006
Système de detection FRET par fluorescence resolu dans le temps et imagerie spectrale Becker&Hickl, Zeiss : 2005

Site Laboratoire TIMC (ICTiss)
Microscope holographique numérique : 2009
Microscope confocal à balayage laser Zeiss LSM710 : 2010
Microscope à force atomique : 2007
Microscope spectral : 2005
Station Vidéo-microscopie avec chambre d'incubation + logiciel traitement d'images : 2008
Station de Bioluminescencee : 2015

Site Institut de Neurosciences Grenoble (PIC-MEC)
Microscope biphotonique (ZEISS LSM 710 NLO) + LASER Ti :Sa, Chameleon Vision II : 2009
ZEISS 7MP upright microscope, 3 NDD (epicollection), motorized stage (living animal) 2014
SliceScope Pro 6000 + TRiMScope II, 4 detectors (2 GaAsP), resonant scanner and galvanometric scanner, Patch-clamp amplifier+2 micromanipulator, LED : 2015
2 Ti-Sapphir lasers: COHERENT Laser Chameleon Vision II (690-1080 nm) + Spectra-Physics Insight DeepSee (680-1300 nm) 2014
Microscope Electronique à Transmission (JEOL JEM-1200 EX II) + TEM CCD camera VELETA : microscope : 1994, Camera CCD: 2009
2 Ultra cryomicrotome : 1994
Appareil congélation haute pression (2014), appareil de cryosubstitution (2012)

Galerie

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