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LyMIC Lyon Multiscale Imaging Center
Responsable : Jean-Louis BESSEREAU • Responsable Tech. : Christophe CHAMOT
Adresse : SFR Santé Lyon-Est (CNRS UMS3453 - INSERM US7)
Faculté de médecine Lyon-Est
4ème étage, aile D
8 avenue Rockefeller
69373 Lyon Cedex 08

complements

Certifications

Pas de certification ISO

Site web

http://lyonbioimage.univ-lyon1.fr

Presentation de la plate-forme

La plate-forme LyMIC représente la concrétisation de la structuration des 3 principaux pôles lyonnais en imagerie cellulaire au sein de l'Idex Lyon. Elle regroupe trois entités complémentaires :

- le PLATIM, implanté dans les locaux de l'Ecole Normale Supérieure, proposant une offre large en microscopie photonique, de la vidéo-microscopie entièrement motorisée au confocal à balayage laser en deux photons. Elle accueille l'ensemble des acteurs de la recherche biologique de Lyon et cultive de plus des interactions privilégiées avec les équipes de chimistes et de physiciens de l'ENS pour le développement de projets aux interfaces physique-chimie-biologie. En particulier, le PLATIM a ouvert récemment l'accès à un microscope à force atomique, qui représente une offre unique sur Lyon.
- le CTmu, situé sur le campus de la Doua, est principalement une PF d'imagerie électronique pluridisciplinaire à l’interface entre la Biologie, la Chimie et la Physique. Elle a mis en place des capacités d'imagerie performantes en microscopie électronique à balayage et en transmission, avec le développement des cryométhodes pour la préparation et l'observation des échantillons. Le CTmu contribue à l'observation et l'analyse de systèmes biologiques (biologie animale, végétale, cellulaire et tissulaire, infectiologie, ingénierie tissulaire...) mais aussi de systèmes mixtes Biologie/Chimie (en particulier nanoparticules), et de matériaux (polymères, ...).
- le CIQLE, a pris possession en avril 2018 de locaux entièrement rénovés dans la faculté de médecine Rockefeller. Il propose des techniques performantes de microscopie photonique (Microscopie photonique confocal et plein champ, super-résolution) et électronique (MET) à la communauté bio-médicale, avec au cours des dernières années le développement d'interactions privilégiées avec le Centre de Recherche en Cancérologie de Lyon et l'Institut NeuroMyoGène. Les nouveaux locaux ont permis d'intégrer au sein même du CIQLE des activités d'histologie et d'anatomopathologie de l'ancienne plateforme Anipath. Une spécificité est également le développement d'un savoir-faire avancé dans le domaine de l'analyse d'image, mis à profit par l'ensemble des bio-imageurs.

Ces trois sites sont ouverts à l'ensemble de la recherche académique et privée et proposent aux utilisateurs conseil, encadrement et formation à l'utilisation des machines selon une charte commune et avec une tarification harmonisée des prestations.

De plus, la PF LyMIC a mis en place une offre très riche de formations coordonnées qui balaient un large spectre des techniques d'imagerie cellulaire photonique et électronique ainsi que de l'analyse des images. Ces formations accueillent des acteurs de la recherche académique et privée, régionaux et nationaux.

Moyens et equipements

PLATIM
Confocal Laser Scanning Microscope with spectral detection DM6000 (Leica) 2007
Spinning Disc confocal microscope DMI4000 inverted (Leica-Roper) 2008
Confocal Laser Scanning Microscope LSM710 inverted (Zeiss) 2010
Multi-photon upgrade (+ OPO + prechirping) Zeiss-Coherent 2011
Confocal Laser Scanning Microscope LSM 780 2012
Elyra superresolution Zeiss microscope for PALM/STORM and SIM microscopy 2014
Facility-made light sheet microscope 2014
Confocal Laser Scanning Microscope LSM800 inverted AxioObserver Z1 2016
Microscope à Force Atomique (Bioscope II Catalyst (Bruker) + Nanowizard III (JPK) et Nano-indenteur TI 950) 2017


CTmu :
- JEOL 2100F high resolution TEM 200kV + STEM Haadf+ X-ray microanalysis+ tomography+ cryobox +camera gatan ultrascan 1000 (2012);
- PHILIPS CM120 MET 120kV (1993)+ X-ray microanalysis (2013) + cryoTEM holder+ camera gatan Orius 200
-ZEISS Merlin Compact (2015) + détecteurs électrons rétrodiffusés, détecteurs in lens secondaire et rétrodiffusés, basse tension, vide partiel, microanalyse X, système shuttle and find
- FEI Quanta 250 SEM FEG (2010)+ backscaterred electrons detectors + beam deceleration+ ESEM and Low vacuum+ cryoSEM (2012) and X-ray microanalysis (2012)
- HPM 100: high pressure freezing system (2014)
- EMPact I: high pressure freezing system (2006)
- AFS 2: Système de cryosubstitution (2018)
- Cryo-ultramicrotomes (1995-2010) ;
- Confocal Zeiss LSM 800 with incubation system (2016)

Centre Imagerie Quantitative Lyon-Est :
- Microscope 2 photons droit Bruker Ultima (2018)
- PALM/STORM super-resolution Nikon microscope (2014); N-STORM analysis software
- Light Sheet Fluorescence microscope Z1 Zeiss (2014)
- Axio Scan.Z1 slide scanner from Zeiss (2014)
- Microscope électronique à Transmission : JEM 1400 avec caméras numériques Gatan (Orius 600 et Orius 1000) et détecteur de microanalyse X acquis en 2007
- Microscope confocal inversé Leica SP5X à détection spectrale acquis en 2012
- Microscope confocal inversé LSM 880 Airyscan biphoton à détection spectral avec contrôle environnemental acquis en 2012 et mise à jour en 2018
- Automate d’imprégnation Leica ASP300 et station d’enrobage Microm MYR EC 350-2
- Microtomes Leica RM2245 et Microm HM 355S
- Automate de coloration Leica Autostainer XL et automate d’immuno-histochimie Roche Discovery XT
- Cryostat Leica CM3050S

Galerie

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